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   中国临床医学  2023, Vol. 30 Issue (4): 683-690      DOI: 10.12025/j.issn.1008-6358.2023.20230113
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达格列净通过p38丝裂原活化蛋白激酶抑制高糖诱导的人肾小球足细胞损伤
罗灵光 , 龙新平 , 韦少恒     
来宾市人民医院内分泌科, 来宾 546100
摘要目的: 探讨达格列净通过p38丝裂原活化蛋白激酶(p38 MAPK)信号通路对D-葡萄糖诱导的人肾小球足细胞凋亡、自噬、炎症反应及氧化损伤的影响。方法: 体外培养人肾小球足细胞(HGPCs),分为对照组(5 mmol/L D-葡萄糖)、D-葡萄糖组(30 mmol/L D-葡萄糖)、达格列净组(30 mmol/L D-葡萄糖+50 μmol/L达格列净)、抑制剂组(30 mmol/L D-葡萄糖+10 μmol/L p38 MAPK通路抑制剂SB 203580)、达格列净+抑制剂组(30 mmol/L D-葡萄糖+50 μmol/L达格列净+10 μmol/L SB 203580)和达格列净+激活剂组(30 mmol/L D-葡萄糖+50 μmol/L达格列净+10 μmol/L p38 MAPK通路激活剂C16-PAF)。对照组与D-葡萄糖组用D-葡萄糖干预24 h;其他组D-葡萄糖干预24 h后相应药物继续干预24 h。采用细胞计数试剂盒-8(CCK-8)检测细胞活力;采用Hoechst 33258染色法检测细胞凋亡率;采用ELISA检测白细胞介素(IL)-1β、IL-6、肿瘤坏死因子α(TNF-α)、丙二醇(MDA)和超氧化物歧化酶(SOD)的表达水平;采用实时荧光定量PCR(RT-qPCR)检测酵母ATG6同源物(Beclin-1)、微管相关蛋白1轻链3 Ⅱ(LC3 Ⅱ)mRNA表达水平;采用Western印迹法检测Beclin-1、LC3 Ⅱ、p53、p38 MAPK及p-p38 MAPK蛋白表达。结果: 与对照组相比,D-葡萄糖组细胞活力降低(P<0.05),达格列净组细胞活力升高(P<0.05),细胞凋亡率,IL-1β、IL-6、TNF-α、MDA、Beclin-1、LC3 ⅡmRNA和蛋白、p53和p-p38 MAPK蛋白水平升高(P<0.05),SOD水平降低(P<0.05)。与D-葡萄糖组相比,达格列净组和抑制剂组细胞凋亡率、IL-1β、IL-6、TNF-α、MDA、Beclin-1、LC3 ⅡmRNA和蛋白、p53和p-p38 MAPK蛋白水平降低(P<0.05),SOD水平升高(P<0.05)。与达格列净组相比,达格列净+抑制剂组细胞凋亡率、IL-1β、IL-6、TNF-α、MDA、Beclin-1、LC3 Ⅱ mRNA和蛋白、p53和p-p38 MAPK蛋白水平进一步降低(P<0.05),SOD水平进一步升高(P<0.05);达格列净+激活剂组与达格列净+抑制剂组变化趋势相反,与达格列净组差异有统计学意义(P<0.05)。结论: 达格列净可抑制高糖诱导的人HGPCs的凋亡、自噬、炎症反应及氧化损伤,其作用机制可能与抑制p38 MAPK通路信号转导相关。
关键词糖尿病肾病    足细胞    达格列净    p38丝裂原活化蛋白激酶信号通路    
Dapagliflozin inhibits human glomerular podocytes damage through p38 mitogen-activated protein kinase
LUO Ling-guang , LONG Xin-ping , WEI Shao-heng     
Department of Endocrinology, the People's Hospital of Laibin, Laibin 546100, Guangxi, China
Abstract: Objective: To explore the effects of dapagliflozin on D-glucose-induced apoptosis, autophagy, inflammation and oxidative damage in human glomerular podocytes through p38 mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling pathway. Methods: The human glomerular podocytes (HGPCs) were divided into control group (5 mmol/L D-glucose), D-glucose group (30 mmol/L D-glucose), dapagliflozin group (30 mmol/L D-glucose+50 μmol/L dapagliflozin), inhibitor group (30 mmol/L D-glucose+ 10 μmol/L p38 MAPK pathway inhibitor SB 203580), Dapagliflozin+inhibitor group (30 mmol/L D-glucose+50 μmol/L dapagliflozin+10 μmol/L SB 203580) and dapagliflozin+activator group (30 mmol/L D-glucose+50 μmol/L dapagliflozin+10 μmol/L p38 MAPK pathway activator C16-PAF). HGPCs were cultured for 24 hours in the control and D-glucose groups, and were intervened for 24 hours with corresponding drugs after cultured for 24 hours. Cell counting kit-8 (CCK-8) was used to detect the cell viability. Hoechst 33258 staining was used to detect the apoptosis rate. ELISA was used to detect the expression levels of inflammatory factors interleukin (IL) -1β, IL-6, tumor necrosis factor-α (TNF-α), malondialdehyde (MDA) and superoxide dismutase (SOD). Real-time fluorescent quantitative PCR (RT-qPCR) was used to detect the mRNA expression levels of yeast ATG6 homolog (Beclin-1) and microtubule-associated protein 1 light chain 3 (LC3) Ⅱ. Western blotting was used to detect the protein expressions of Beclin-1, LC3Ⅱ, p53, p38 MAPK and p-p38 MAPK. Results: Compared with the Control group, the cell viability was significantly decreased in the D-glucose group (P < 0.05) and was increased in the dapagliflozin group (P < 0.05). Compared with the control group, the apoptosis rate, IL-1β, IL-6, TNF-α, MDA, mRNA and protein levels of Beclin-1 and LC3 Ⅱ, protein levels of p53 and p-p38 MAPK were increased (P < 0.05), and SOD level was decreased (P < 0.05) in the D-glucose group. Compared with the D-glucose group, the apoptosis rate, IL-1β, IL-6, TNF-α, MDA, mRNA and protein levels of Beclin-1 and LC3 Ⅱ, protein levels of p53 and p-p38 MAPK were decreased in dapagliflozin group and inhibitor groups (P < 0.05), SOD level was increased (P < 0.05). Compared with the dapagliflozin group, the apoptosis rate, IL-1β, IL-6, TNF-α, MDA, mRNA and protein levels of Beclin-1 and LC3 Ⅱ, protein levels of p53 and p-p38 MAPK were further decreased in the dapagliflozin+inhibitor group (P < 0.05), SOD level was further increased (P < 0.05), and the change trend of these indicators in dapagliflozin+activator group was opposite to dapagliflozin+inhibitor group (P < 0.05). Conclusions: Dapagliflozin can inhibit the apoptosis, autophagy, inflammation and oxidative damage induced by D-glucose in HGPCs, and its mechanism may be related to the inhibition of p38 MAPK pathway signal transduction.
Key words: diabetic nephropathy    human glomerular podocyte    dapagliflozin    p38 mitogen-activated protein kinase signaling pathway    

糖尿病肾病属于糖尿病的一种微血管并发症,代谢异常与炎症反应都会引起糖尿病肾病,如果没有及时诊疗,严重者会发生肾脏功能衰竭导致死亡。目前,临床多通过控制血糖延缓糖尿病肾病进程,缺乏有效的治疗方法[1]。达格列净(dapagliflozin)是新型口服降糖药,不仅能够降低血糖,还能保护肾脏疾病患者肾功能。近期研究[2-3]表明,达格列净能通过抑制足细胞损伤延缓糖尿病肾病发展。

p38丝裂原活化蛋白激酶(p38 mitogen-activated protein kinase,p38 MAPK)是MAPKs家族重要成员,影响细胞分化、凋亡与炎症反应,且影响糖尿病肾病进程[4]。Shahrani等[5]发现,决明子叶提取物能通过p38 MAPK信号通路减弱大鼠肾小球内皮细胞自噬作用,改善其糖尿病肾病。目前,达格列净能否通过p38 MAPK信号通路影响足细胞生物学行为,进而干预糖尿病肾病进程,尚不明确。

本研究采用D-葡萄糖诱导人肾小球足细胞(human glomerular podocytes,HGPCs)高糖模型,探讨达格列净对高糖诱导的HGPCs凋亡、自噬及炎症反应的影响及与p38 MAPK信号通路的关系,以期为达格列净肾脏保护机制的深入研究提供体外依据。

1 材料与方法 1.1 细胞与试剂

HGPCs购自北京北纳创联生物技术研究院。达格列净购自湖北威德利化学科技有限公司,D-葡萄糖购自上海阿拉丁生化科技股份有限公司,p38 MAPK通路抑制剂SB 203580、p38 MAPK通路激活剂C16-PAF购自上海源叶生物科技有限公司,DMEM-F12培养基、胎牛血清购自美国Gibco公司,青-链霉素混合液购自北京诺博莱德科技有限公司。CCK-8试剂盒购自翌圣生物科技(上海)股份有限公司,ELISA检测试剂盒购自上海和序生物科技有限公司,RNA抽提试剂盒购自北京华越洋生物科技有限公司(引物购自北京擎科生物科技股份有限公司)。鼠抗人[酵母ATG6同源物(Beclin-1)、微管相关蛋白1轻链3(microtubule-associated protein 1 light chain 3,LC3)Ⅱ、p53、p38 MAPK、p-p38 MAPK及β-actin一抗]、辣根过氧化物酶标记的山羊抗鼠IgG(二抗)购自武汉三鹰生物技术有限公司。7500型实时荧光定量PCR仪购自美国ABI公司。本研究经来宾市人民医院医学伦理委员会批准(2022-19)。

1.2 HGPCs培养及达格列净浓度选择

冻存HGPCs进行复苏后,加入DMEM-F12培养基(含10%胎牛血清、1%青-链霉素),置于37℃、5% CO2条件培养箱中培养,细胞密度为80%~90%时进行细胞传代或后续实验。

将HGPCs分为对照组、D-葡萄糖组、达格列净(低、中、高)组进行预实验:对照组加入5 mmol/L D-葡萄糖处理24 h;D-葡萄糖组加入30 mmol/L D-葡萄糖处理24 h;达格列净低/中/高组在D-葡萄糖诱导24 h后,分别加入12.5、25、50 μmol/L达格列净进行24 h干预。根据CCK-8预实验结果选择50 μmol/L达格列净(图 1)进行后续实验。

图 1 CCK-8法选择达格列净浓度 对照组加入5 mmol/L D-葡萄糖处理24 h;D-葡萄糖组加入30 mmol/L D-葡萄糖处理24 h;达格列净低、中、高组加入5 mmol/LD-葡萄糖诱导24 h后,分别加入12.5、25、50 μmol/L达格列净,干预24 h。*P<0.05与对照组相比;P<0.05与D-葡萄糖组相比。
1.3 分组及给药方法

将HGPCs分为对照组、D-葡萄糖组、达格列净组、抑制剂组、达格列净+抑制剂组和达格列净+激活剂组:对照组加入5 mmol/L D-葡萄糖干预24 h;D-葡萄糖组加入30 mmol/L D-葡萄糖干预24 h;达格列净组在D-葡萄糖诱导24 h后,加入50 μmol/L达格列净干预24 h;抑制剂组在D-葡萄糖诱导24 h后,加入10 μmol/L p38 MAPK通路抑制剂SB 203580干预24 h;达格列净+抑制剂组在D-葡萄糖诱导24 h后,加入50 μmol/L达格列净及10 μmol/L SB 203580干预24 h;达格列净+激活剂组在D-葡萄糖诱导24 h后,加入50 μmol/L达格列净及10 μmol/L p38 MAPK通路激活剂C16-PAF干预24 h。每组设置3个复孔。

1.4 CCK-8法测定HGPCs细胞活力

收集对数期生长的细胞,调整密度至2×105个/mL,接种于96孔板,每孔加细胞悬液100 μL。各组细胞干预后,加入CCK-8溶液10 μL孵育2 h,用酶标仪测定各组光密度(D450)。$细胞活力 = \frac{{{D_{\mathrm{D} - 葡萄糖组或达格列净组}} \;\;\;\;\;\;\;\;\;\;\;\;- {D_{空白组}}}}{{{D_{对照组}} - {D_{空白组}}}} \times 100\%$

1.5 Hoechst 33258染色法测定HGPCs细胞凋亡

收集各组干预后细胞,用PBS洗涤2次,加入新鲜配置的4%多聚甲醛,4℃固定10 min,PBS洗涤3次;Hoechst 33258染色液(5 mg/L)染色10 min,PBS洗涤3次;封固后荧光显微镜观察、拍照。细胞凋亡特征为核体积缩小,染色不均浓染且发较强亮蓝色荧光。

1.6 ELISA测定炎症因子及过氧化指标水平

收集各组干预24 h后的细胞,于4℃以12 000×g离心10 min,收集上清液,按ELISA试剂盒说明书,测定细胞中白细胞介素(interleukin,IL)-1β、IL-6、肿瘤坏死因子α (tumor necrosis factor-α,TNF-α)、丙二醇(propylene glycol,MDA)和超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)水平,以D450表示。

1.7 RT-qPCR测定HGPCs细胞自噬

收集各组干预后的细胞,用RNA抽提试剂盒提取细胞样本总RNA,反转录为cDNA(引物序列见表 1),取2 μL反转录产物进行PCR检测,每个样品重复检测5次。以GAPDH基因作为内参,2-ΔΔCt法计算目的基因相对表达量。

表 1 RT-qPCR引物序列
名称 引物序列
GAPDH
  F (5'-3') TGACTTCAACAGCGACACCCA
  R(5'-3') CACCCTGTTGCTGTAGCCAAA
Beclin-1
  F (5'-3') AACCAACGTCTTTAATGCAACCTTC
  R(5'-3') AGCAGCATTAATCTCATTCCATTCC
LC3Ⅱ
  F (5'-3') AACATGAGCGAGTTGGTCAAG
  R(5'-3') GCTCGTAGATGTCCGCGAT
1.8 Western印迹法检测HGPCs中自噬相关蛋白及p38 MAPK信号通路蛋白水平

收集各组干预后各组细胞,提取蛋白,进行SDS-PAGE凝胶电泳、转膜、封闭2 h后参照抗体说明书,加入一定稀释比例的Beclin-1、LC3 Ⅱ、p53、p38 MAPK、p-p38 MAPK及β-actin一抗,4℃孵育过夜,次日洗膜TBST洗涤后加入山羊抗鼠IgG二抗,孵育2 h,洗涤3次,用显影液及凝胶成像系统显影并拍照记录。

1.9 统计学处理

采用SPSS 25.0软件进行统计分析,计量资料均符合正态分布,以x±s表示,多组间采用单因素方差分析,两组间比较Dunnett t检验;检验水准(α)为0.05。

2 结果 2.1 HGPCs细胞凋亡能力

Hoechst 33258染色结果(图 2)显示:与对照组相比,D-葡萄糖组细胞凋亡率升高(P<0.05)。与D-葡萄糖组相比,达格列净组、抑制剂组细胞凋亡率降低(P<0.05)。与达格列净组相比,达格列净+抑制剂组细胞凋亡率进一步降低(P<0.05),达格列净+激活剂组细胞凋亡率升高(P<0.05)。

图 2 各组HGPCs细胞凋亡率比较 A:Hoechst 33258染色;B:定量分析。HGPCs:人肾小球足细胞。Original magnification: ×20;n=3, x±s*P<0.05与对照组相比,P<0.05与D-葡萄糖组相比,P<0.05与达格列净组相比。
2.2 HGPCs炎症水平

ELISA结果(图 3)显示:与对照组相比,D-葡萄糖组细胞IL-1β、IL-6、TNF-α水平升高(P<0.05)。与D-葡萄糖组比较,达格列净组、抑制剂组细胞IL-1β、IL-6、TNF-α水平降低(P<0.05)。与达格列净组比较,达格列净+抑制剂组细胞IL-1β、IL-6、TNF-α水平进一步降低(P<0.05),达格列净+激活剂组细胞IL-1β、IL-6、TNF-α水平升高(P<0.05)。

图 3 各组HGPC细胞IL-1β、IL-6、TNF-α水平比较 HGPCs:人肾小球足细胞;IL-1β:白细胞介素1β;IL-6:白细胞介素6;TNF-α:肿瘤坏死因子α。n=3, x±s*P<0.05与对照组相比,P<0.05与D-葡萄糖组相比,P<0.05与达格列净组相比。
2.3 HGPCs氧化水平

ELISA结果(图 4)显示:与对照组比较,D-葡萄糖组细胞MDA水平升高、SOD水平降低(P<0.05)。与D-葡萄糖组比较,达格列净组和抑制剂组MDA水平降低、SOD水平升高(P<0.05)。与达格列净组比较,达格列净+抑制剂组MDA水平进一步降低,SOD水平进一步升高,达格列净+激活剂组MDA水平升高、SOD水平降低(P<0.05)。

图 4 各组HGPCs MDA和SOD表达水平比较 HGPCs:人肾小球足细胞;MDA:丙二醇;SOD:超氧化物歧化酶。n=3, x±s*P<0.05与对照组相比,P<0.05与D-葡萄糖组相比,P<0.05与达格列净组相比。
2.4 HGPCs细胞自噬水平

结果(图 5)显示:与对照组相比,D-葡萄糖组细胞Beclin-1、LC3 Ⅱ mRNA和蛋白表达水平升高(P<0.05)。与D-葡萄糖组比较,达格列净组、抑制剂组细胞Beclin-1、LC3 Ⅱ mRNA和蛋白表达水平降低(P<0.05)。与达格列净组比较,达格列净+抑制剂组细胞Beclin-1、LC3 Ⅱ mRNA和蛋白表达水平进一步降低(P<0.05);达格列净+激活剂组Beclin-1、LC3 Ⅱ mRNA和蛋白表达水平进一步升高(P<0.05)。

图 5 各组HGPCs细胞自噬相关因子mRNA和蛋白表达比较 A:Western印迹检测蛋白表达;B:Western印迹定量结果;C:RT-qPCR检测mRNA相对表达量。Beclin-1:酵母ATG6同源物;LC3Ⅱ:微管相关蛋白1轻链3Ⅱ。n=3, x±s*P<0.05与对照组相比,P<0.05与D-葡萄糖组相比,P<0.05与达格列净组相比。
2.5 HGPCs中p53和p38 MAPK信号通路相关蛋白表达

结果(图 6)显示:与对照组比较,D-葡萄糖组细胞p53、p-p38 MAPK蛋白表达水平升高(P<0.05);与D-葡萄糖组比较,达格列净组和抑制剂组p53、p-p38 MAPK蛋白表达水平降低(P<0.05);与达格列净组比较,达格列净+抑制剂组p53、p-p38 MAPK蛋白表达水平进一步降低(P<0.05),达格列净+激活剂组p53、p-p38 MAPK蛋白表达水平升高(P<0.05)。各组p38 MAPK蛋白表达水平差异无统计学意义。

图 6 各组HGPCs中p53、p38 MAPK信号通路相关蛋白表达水平比较 A:Western印迹检测蛋白表达;B:Western印迹定量结果。MAPK:丝裂原活化蛋白激酶。n=3, x±s*P<0.05与对照组相比,P<0.05与D-葡萄糖组相比,P<0.05与达格列净组相比。
3 讨论

足细胞在肾小球基底膜外表面排列,是肾小球滤过屏障的关键组成部分,与肾小球基底膜、内皮细胞共同参与调节肾小球滤过功能。糖尿病肾病患者由于足细胞凋亡增加,肾小球滤过屏障功能减弱,进而出现蛋白尿[6]。达格列净是一种钠-葡萄糖协同转运蛋白2抑制剂,在降低血糖的同时具有肾脏保护作用。祝再然等[7]研究发现,达格列净能使糖尿病肾病大鼠血糖水平降低,并减轻足细胞损伤,减少尿蛋白,改善肾功能。本研究中,用50 μmol/L达格列净干预后,D-葡萄糖引起的HGPCs细胞活力降低改善明显,且细胞凋亡率降低(P<0.05)。

炎症反应参与多种疾病的生理与病理进程,是机体较为重要的防御机制,Mihai等[8]研究显示,炎症反应可影响肾内微循环调节与灌注分布,导致IL-6、TNF-α等炎症因子在体内积累,加快慢性肾脏病进展。本研究中,D-葡萄糖组HGPCs IL-1β、IL-6、TNF-α水平升高。孙凌云等[9]研究证实,达格列净能使高糖诱导的人近端肾小管上皮细胞HK-2中氧化应激和肾损伤标志物MDA的水平降低、SOD水平升高。自噬是细胞内高度保守的物质分解代谢与循环过程,氧化应激所产生的活性氧能诱导自噬的发生,而自噬又能够下调活性氧水平,从而调节细胞氧化应激水平[10]。本研究发现达格列净和SB 203580能够降低D-葡萄糖诱导的HGPCs细胞凋亡率、IL-1β、IL-6、TNF-α、MDA水平,且自噬相关因子Beclin-1、LC3 Ⅱ mRNA和蛋白表达水平也发生降低现象,而SOD水平升高,提示达格列净和SB 203580可以抑制足细胞凋亡、自噬与炎症反应,保护细胞氧化损伤。

MAPK是包括p38 MAPK、应激活化蛋白激酶(stress-activated protein kinase, SAPK)及细胞外信号调节蛋白激酶(extracellular regulated protein kinases, ERK)等在内的丝氨酸-苏氨酸蛋白激酶家族。p38 MAPK作为该家族重要成员,参与调节细胞分化、凋亡及炎症反应等多种生物学过程[11-13]。Lu等[14]研究发现,蛋白磷酸酶2A能通过抑制p38 MAPK通路改善足细胞损伤。Zhu等[15]报道,p38 MAPK信号通路与糖尿病肾病进程关系密切。马冰沁等[16]研究证实,芦荟苷能通过下调p38 MAPK信号通路实现抗炎和改善足细胞损伤作用;同时,该研究中,芦荟苷干预后大鼠血清中IL-1β、TNF-α水平与肾组织中MDA、活性氧(reactive oxygen species, ROS)降低,肾组织中SOD水平升高。Fırat等[17]研究表明,达格列净能够发挥对糖尿病肾病大鼠的保护作用。杨晶[18]关于达格列净通过p38 MAPK信号通路抑制乳腺癌细胞生长的结论也提示两者存在一定关系。本研究中,D-葡萄糖组HGPCs中p53、p-p38 MAPK蛋白表达升高(P<0.05),达格列净组细胞中p53、p-p38 MAPK蛋白表达降低(P<0.05),同时达格列净抑制了高糖引起的细胞凋亡率、炎症反应、自噬、氧化应激水平的升高(P<0.05),与p38 MAPK抑制剂组表现一致,提示达格列净可能通过下调p38 MAPK信号通路活性水平发挥对足细胞的保护作用。

综上所述,本实验显示,达格列净能抑制D-葡萄糖诱导的HGPCs凋亡、炎症反应、自噬与氧化损伤,与p38 MAPK通路抑制剂保护HGPCs的作用一致,提示达格列净可能通过抑制p38 MAPK通路发挥对肾脏功能的保护功能。但达格列净是否还存在其他途径调控D-葡萄糖诱导的HGPCs的生物学行为,仍须进一步验证。

利益冲突:  所有作者声明不存在利益冲突。

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引用本文
罗灵光, 龙新平, 韦少恒. 达格列净通过p38丝裂原活化蛋白激酶抑制高糖诱导的人肾小球足细胞损伤[J]. 中国临床医学, 2023, 30(4): 683-690.
LUO Ling-guang, LONG Xin-ping, WEI Shao-heng. Dapagliflozin inhibits human glomerular podocytes damage through p38 mitogen-activated protein kinase[J]. Chinese Journal of Clinical Medicine, 2023, 30(4): 683-690.
基金项目
广西省来宾市科学研究与技术开发计划项目(来科转220907)
Foundation item
Supported by Scientific Research and Technology Development Plan Project of Laibin of Guangxi Province (220907)

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