2. 复旦大学附属中山医院病理科, 上海 200032
2. Department of Pathology, Zhongshan Hospital, Fudan University, Shanghai 200032, China
胃肠道间质瘤(gastrointestinal stromal tumor,GIST)起源于Caja细胞,是消化系统最常见的间叶源性肿瘤,占胃肠道肿瘤总数的1%~4%,每年发病率约为2/10万[1-2]。GIST可发生在消化系统的任何部位,其中以胃(60%)和小肠(30%)最常见[3-4]。肝转移和腹腔播散是GIST临床上最常见的恶性表现,淋巴结转移少见。c-Kit基因及血小板衍生生长因子受体α(platelet-derived growth factor receptor alpha,PDGFRα)基因的功能获得性突变是GIST发病的主要机制[5]。75%~80%GIST存在c-Kit基因突变,5%~10%GIST伴PDGFRα基因突变[6],10%~15%GIST既无PDGFRα基因突变也无c-Kit基因突变,被称为野生型GIST。一部分野生型GIST患者伴SDH基因改变,被称为SDH缺陷型,也有极少数病例存在NF-1、BRAF等其他基因的罕见突变[7]。
甲磺酸伊马替尼(imatinib mesylate,IM)是一种选择性酪氨酸激酶抑制剂,自2002年获得美国FDA批准以来,已成功应用于治疗转移性和(或)无法切除的GIST患者,同时也用于高危复发风险患者的术后辅助治疗。随着药物的临床应用,其耐药问题也日益彰显,10%~15%患者存在原发耐药,40%~50%患者在2年内出现继发性耐药[8]。SDH缺陷型GIST患者多表现为原发耐药。继发性耐药的可能机制则包括c-Kit和PDGFRα基因的二次突变、基因扩增、下游信号通路的异常活化、IM血药浓度及细胞内药物浓度的改变等[9]。IM耐药机制尚未被完全阐明,可能是多个机制共同作用的结果。因此,IM耐药是目前GIST临床治疗的难点,也是当下临床研究的热点。
胰岛素样生长因子家族(insulin-like growth factors,IGFs)由胰岛素样生长因子1(insulin-like growth factor 1,IGF-1)、胰岛素样生长因子2(insulin-like growth factor 2,IGF-2)、胰岛素样生长因子1受体(insulin-like growth factor 1 receptor,IGF1R)、胰岛素受体(insulin receptor,IR)及6个胰岛素生长因子结合蛋白(IGF-binding proteins,IGFBPs)组成[10]。IGFs在细胞分化、增殖及个体的生长发育中具有重要的促进作用[11-12],也与肿瘤形成及发展密切相关。Tarn等[13]报道,野生型GIST中IGF1R的表达高于c-Kit/PDGFRα突变型标本,提示IGF1R可能是原发性耐药患者的潜在治疗靶点。因此,本研究回顾性分析复旦大学附属中山医院收治的134例GIST组织IGF1R的表达水平与IM耐药的关系,探讨IGF1R对IM耐药GIST患者预后的潜在价值。
1 资料与方法 1.1 一般资料收集2008年1月至2014年1月复旦大学附属中山医院普通外科收治的经病理确诊的GIST患者的临床及病理资料。将所有病例术后组织石蜡切片制作组织芯片用于免疫组化染色。患者出院后通过门诊及电话随访患者生存情况。本研究患者均知情同意且签署知情同意书。
1.2 免疫组化法检测组织芯片中IGFR蛋白的表达IGFR检测采用免疫组织化学法。组织芯片使用二甲苯脱蜡,梯度乙醇溶液(无水、95%、75%)脱水,TBS冲洗。柠檬酸抗原修复液处理后加入3%双氧水阻断其内源性过氧化物酶。冲洗后用10%山羊血清孵育30 min。移去血清,滴加按1:150稀释的兔抗人多克隆IGF1R抗体(Abcam公司,美国)4℃孵育。冲洗后滴加生物素标记二抗(EnVision抗兔IgG试剂盒,Dako公司,丹麦),室温孵育30 min后移去二抗,滴加新鲜配制的DAB显色并使用苏木精对比染色。梯度乙醇溶液脱水,二甲苯透明,封片剂封片后镜检。
1.3 免疫组化结果判读以染色强度结合阳性细胞数百分比综合计分,组织切片中胞质染为淡黄色至棕褐色者为阳性细胞。染色强度以多数细胞呈现的染色特性(染色深浅需与背景着色相对比)计分:无着色为0分,淡黄色为1分,棕黄色为2分,棕褐色为3分。阳性细胞百分比即光学显微镜下随机取5个高倍视野(×400),每个视野中计数100个肿瘤细胞,取阳性细胞平均数:0~5%为0分,6%~25%为1分,26%~50%为2分,51%~75%为3分,>75%为4分。染色结果为染色强度与阳性细胞百分比的乘积:0分为阴性(-),1~4分为弱阳性(+),5~8分为阳性(++),9~12分为强阳性(+++)。评分 < 5分为IGF1R低表达,≥5分为IGF1R高表达,以上结果由2位有经验的病理科医生完成。
1.4 统计学处理采用SPSS 24.0分析数据。计数资料采用χ2检验,采用Kaplan-Meier绘制生存曲线,生存分析的组间比较采用log-rank检验,采用Cox风险比例回归模型对IM耐药患者行预后危险因素分析。检验水准(α)为0.05。
2 结果 2.1 GIST患者不同临床病理特征下IGF1R蛋白表达差异结果(表 1)显示:GIST组织IGF1R蛋白表达水平在不同性别、年龄、肿瘤大小、原发部位、核分裂相、突变基因、NIH危险度分级组间表达差异无统计学意义;IM耐药患者GIST组织IGF1R蛋白的表达率(73.08%)高于非IM耐药患者(41.67%),差异有统计学意义(χ2=8.286,P=0.004),提示IGF1R高表达可能与GIST患者IM耐药相关。图 1示GIST标本病理结果。
n(%) | |||||||||||||||||||||||||||||
指标 | 总计 | IGF1R低表达(N=70) | IGF1R高表达(N=64) | P值 | |||||||||||||||||||||||||
性别 | 0.487 | ||||||||||||||||||||||||||||
男 | 96(71.64) | 52(54.17) | 44(45.83) | ||||||||||||||||||||||||||
女 | 38(28.36) | 18(47.37) | 20(52.63) | ||||||||||||||||||||||||||
年龄 | 0.391 | ||||||||||||||||||||||||||||
≤60岁 | 66(49.25) | 32(48.48) | 34(51.52) | ||||||||||||||||||||||||||
>60岁 | 68(50.75) | 38(55.88) | 30(44.12) | ||||||||||||||||||||||||||
肿瘤最大径 | 0.908 | ||||||||||||||||||||||||||||
≤5 cm | 28(20.90) | 14(50.00) | 14(50.00) | ||||||||||||||||||||||||||
5.1~10 cm | 66(49.25) | 34(51.52) | 32(48.48) | ||||||||||||||||||||||||||
>10 cm | 40(29.85) | 22(55.00) | 18(45.00) | ||||||||||||||||||||||||||
肿瘤原发部位 | 0.768 | ||||||||||||||||||||||||||||
胃 | 53(39.55) | 26(49.06) | 27(50.9) | ||||||||||||||||||||||||||
小肠 | 63(47.02) | 35(55.56) | 28(44.44) | ||||||||||||||||||||||||||
其他 | 18(13.43) | 9(50.00) | 9(50.00) | ||||||||||||||||||||||||||
核分裂相 | 0.474 | ||||||||||||||||||||||||||||
≤5/50HP | 35(26.12) | 21(60.00) | 14(40.00) | ||||||||||||||||||||||||||
5~10/50HP | 16(11.94) | 9(56.25) | 7(43.75) | ||||||||||||||||||||||||||
≥10/50HP | 83(61.94) | 40(48.19) | 43(51.81) | ||||||||||||||||||||||||||
突变基因 | 0.163 | ||||||||||||||||||||||||||||
野生型 | 16(11.94) | 7(43.75) | 9(56.25) | ||||||||||||||||||||||||||
c-Kit | 108(80.60) | 55(50.93) | 53(49.07) | ||||||||||||||||||||||||||
PDGFRα | 10(7.46) | 8(80.00) | 2(20.00) | ||||||||||||||||||||||||||
NIH危险度分级 | 0.505 | ||||||||||||||||||||||||||||
低 | 6(4.48) | 3(50.00) | 3(50.00) | ||||||||||||||||||||||||||
中 | 10(7.46) | 7(70.00) | 3(30.00) | ||||||||||||||||||||||||||
高 | 118(88.06) | 60(50.85) | 58(49.15) | ||||||||||||||||||||||||||
IM耐药 | 0.004 | ||||||||||||||||||||||||||||
耐药 | 26(19.40) | 7(26.92) | 19(73.08) | ||||||||||||||||||||||||||
非耐药 | 108(80.60) | 63(58.33) | 45(41.67) | ||||||||||||||||||||||||||
IGF1R:胰岛素样生长因子1受体;IM:甲磺酸伊马替尼 |
中位随访64.5(1~96)个月,134例患者中9例患者失访,27例患者死亡。26例IM耐药患者中2例失访,12例死亡。26例IM耐药患者预后风险的单因素分析结果(表 2,图 2)显示:IGF1R的表达水平与总生存时间相关,IGF1R高表达患者总生存时间短于IGF1R低表达患者(35.3 vs 71.3个月,P=0.04)。多因素分析结果(表 3)表明:肿瘤原发部位、IGF1R表达水平是影响IM耐药患者总生存时间的独立危险因素。
指标 | OS(月) | P值 |
性别 | 0.369 | |
男 | 54.4 | |
女 | 57.0 | |
年龄 | 0.47 | |
≤60岁 | 55.1 | |
>60岁 | 55.4 | |
肿瘤原发部位 | 0.259 | |
胃 | 65.4 | |
非胃 | 37.2 | |
核分裂相 | 0.44 | |
≤5/50HP | 86.5 | |
5~10/50HP | 57.6 | |
>10/50HP | 29.1 | |
IGF1R表达 | 0.04 | |
低表达 | 71.3 | |
高表达 | 35.3 | |
肿瘤最大径 | 0.7 | |
≤10 cm | 86.6 | |
>10 cm | 40.3 | |
OS:总生存时间;IGF1R:胰岛素样生长因子1受体 |
变量 | Exp(B) | 95%CI | P值 |
年龄 | 0.91 | 0.83~1.00 | 0.058 |
性别 | 0.02 | 0.00~2.15 | 0.098 |
肿瘤原发部位 | 11.21 | 1.14~110.2 | 0.038 |
肿瘤最大径 | 0.94 | 0.78~1.14 | 0.531 |
核分裂相 | 0.99 | 0.95~1.03 | 0.569 |
IGF1R | 71.90 | 1.41~3 664.37 | 0.033 |
IGF1R:胰岛素样生长因子1受体 |
IGF1R是一种跨膜受体酪氨酸激酶,可结合其配体IGF-1和IGF-2而被激活,并通过活化下游信号通路,包括磷脂酰肌醇3激酶-蛋白质丝氨酸苏氨酸激酶(PI3K-Akt)信号通路及丝裂原活化蛋白激酶(MAKP)通路,发挥生物学效应。近年来,IGFs在GIST发生发展中的作用也引起了关注。Tarn等[13]报道相对于c-Kit/PDGFRα突变型GIST,野生型GIST中IGF1R的表达显著升高,而野生型GIST往往表现为原发性耐药。而IGF1R是否参与了胃肠道间质瘤IM耐药目前尚不清楚。
本研究中,在IM耐药患者GIST组织IGF1R蛋白表达显著高于非耐药患者,由此推测IGF1R可能参与IM耐药的产生。Codony-Servat等[14]研究发现,在转移性结直肠癌中细胞核IGF1R的高表达可能导致化疗及靶向药物耐药的产生。近年来多个针对IGF1R的靶向药物已陆续进入临床试验,现有证据表明目前抗IGF1R治疗最大的作用在于预防或逆转传统治疗耐药。并且相较于单独应用,抗IGF1R治疗联合化疗或靶向治疗能增加获益[15]。Chen等[16]在IM耐药细胞系(GIST430和GIST48)中使用linstinib(一种IR/IGF1R抑制剂)与IM联合治疗,分别导致IM GIST430和GIST48的生存力降低60%和80%;而在IM敏感的GIST882细胞系中联合治疗与IM单药的效果相当。因此,IGF1R可作为IM耐药病例的潜在治疗靶点。本研究中,针对26例IM耐药患者的生存分析提示,IGF1R高表达患者总生存时间显著缩短,推测在IM耐药患者中IGF1R可作为预后不良的标志。同时,多项临床试验发现,IGF1R高表达的患者能从抗IGF1R治疗中获益。Asmane等[17]发现在使用抗IGF1R治疗的肉瘤患者中,IGF1R的核定位增加与良好的生存预后显著相关,提示IGF1R的表达或可成为筛选患者及监测治疗反应的潜在生物学标志物。
综上所述,本研究发现,IM耐药患者GIST组织中IGF1R的表达显著增高,IGF1R高表达患者的总生存时间短于IGF1R低表达患者,提示IGF1R参与GIST IM耐药的同时,或可作为IM耐药患者的预后判断指标,并且可能是IM耐药患者的潜在治疗靶点。
[1] |
NOWAIN A, BHAKTA H, PAIS S, et al. Gastrointestinal stromal tumors:clinical profile, pathogenesis, treatment strategies and prognosis[J]. J Gastroenterol Hepatol, 2005, 20(6): 818-824.
[DOI]
|
[2] |
盛卫忠, 刘寒, 吴海福, 等. 腹腔镜手术治疗胃肠道间质瘤的疗效分析[J]. 中国临床医学, 2012, 19(6): 637-639. [URI]
|
[3] |
MIETTENEN M, LASOTA J. Gastrointestinal stromal tumors:pathology and prognosis at different sites[J]. Semin Diagn Pathol, 2006, 23(2): 70-83.
[DOI]
|
[4] |
盛卫忠, 姚璐, 董天庚, 等. 急性下消化道出血的临床外科诊治分析[J]. 中国临床医学, 2019, 26(6): 866-869. [URI]
|
[5] |
HIROTA S, ISOZAKI K, MORIYAMA Y, et al. Gain-of-function mutations of c-kit in human gastrointestinal stromal tumors[J]. Science, 1998, 279(5350): 577-580.
[DOI]
|
[6] |
BANNON A E, KLUG L R, CORLESS C L, et al. Using molecular diagnostic testing to personalize the treatment of patients with gastrointestinal stromal tumors[J]. Expert Rev Mol Diagn, 2017, 17(5): 445-457.
[DOI]
|
[7] |
HEINRICH M C, CORLESS C L, DUENSING A, et al. PDGFRA activating mutations in gastrointestinal stromal tumors[J]. Science, 2003, 299(5607): 708-710.
[DOI]
|
[8] |
BLANKE C D, DEMETRI G D, VON MEHREN M, et al. Long-term results from a randomized phase Ⅱ trial of standard-versus higher-dose imatinib mesylate for patients with unresectable or metastatic gastrointestinal stromal tumors expressing KIT[J]. J Clin Oncol, 2008, 26(4): 620-625.
[DOI]
|
[9] |
孙祥飞, 高晓东, 沈坤堂. 胃肠间质瘤中伊马替尼继发性耐药机制的研究进展[J]. 中华胃肠外科杂志, 2019, 22(9): 886-890. [URI]
|
[10] |
TANIGUCHI C M, EMANUELLI B, KAHN C R. Critical nodes in signalling pathways:insights into insulin action[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2006, 7(2): 85-96.
[URI]
|
[11] |
MENTING J G, WHITTAKER J, MARGETTS M B, et al. How insulin engages its primary binding site on the insulin receptor[J]. Nature, 2013, 493(7431): 241-245.
[DOI]
|
[12] |
YAKAR S, WERNER H, ROSEN C J. Insulin-like growth factors:actions on the skeleton[J]. J Mol Endocrinol, 2018, 61(1): T115-T137.
|
[13] |
TARN C, RINK L, MERKEL E, et al. Insulin-like growth factor 1 receptor is a potential therapeutic target for gastrointestinal stromal tumors[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2008, 105(24): 8387-8392.
[DOI]
|
[14] |
CODONY-SERVAT J, CUATRECASAS M, ASENSIO E, et al. Nuclear IGF-1R predicts chemotherapy and targeted therapy resistance in metastatic colorectal cancer[J]. Br J Cancer, 2017, 117(12): 1777-1786.
[DOI]
|
[15] |
WERNER H, SARFSTEIN R, BRUCHIM I. Investigational IGF1R inhibitors in early stage clinical trails for cancer therapy[J]. Expert Opin Investing Drugs, 2019, 28(12): 1101-1112.
[DOI]
|
[16] |
CHEN W, KUANG Y, QIU H B, et al. Dual targeting of insulin receptor and KIT in imatinib-resistant gastrointestinal stromal tumors[J]. Cancer Res, 2017, 77(18): 5107-5117.
[DOI]
|
[17] |
ASMANE I, WATKIN E, ALBERTI L, et al. Insulin-like growth factor type 1 receptor (IGF-1R) exclusive nuclear staining:a predictive biomarker for IGF-1R monoclonal antibody (Ab) therapy in sarcomas[J]. Eur J Cancer, 2012, 48(16): 3027-3035.
[DOI]
|